O sucesso do tratamento com inseticida residual depende, entre outros fatores, do nível de resistência da população (Barson et al., 1992). Segundo Collins (1985), uma das maiores desvantagens dos protetores químicos de grãos é a habilidade dos insetos de se tornarem resistentes a esses produtos.

De acordo com Watson & Barson (1996), a incidência e o grau de resistência de O. surinamensis a inseticidas têm aumentado desde a detecção de resistência ao inseticida lindane, no início da década de setenta.

Como O. surinamensis não possui grande habilidade de vôo (Champ & Dyte, 1976), infestações em armazéns são decorrentes de recebimento de grãos já infestados ou de populações residuais no próprio armazém. Populações residentes em armazéns sob pressão de seleção por inseticidas favorecem a infestação de grãos (Collins, 1985) e o aumento da resistência a inseticidas. Segundo Taylor & Georghiou (1982), modelos de simulação indicam que certas condições, como amplo uso de inseticidas residuais contra populações de insetos com pouca ou nenhuma imigração de indivíduos suscetíveis, são ideais para desenvolvimento de resistência.

Essa situação vem sendo observada em armazéns da região sul do Brasil, onde O. surinamensis tem aparecido praticamente em todas as unidades armazenadoras, causando danos aos grãos. A espécie tem apresentado tolerância a tratamentos químicos e é das primeiras a colonizar a massa de grãos após aplicação de inseticidas (Lorini, 2001).

Como no Brasil não existe comprovação de resistência de O. surinamensis a inseticidas, o objetivo deste trabalho foi avaliar a resistência de populações coletadas em unidades armazenadoras da região sul, aos inseticidas piretróides, deltamethrin e bifenthrin, e aos organofosforados, pirimiphos-methyl e fenitrothion, indicados para controle da praga.

Foram usadas cinco raças de O. surinamensis, provenientes de populações coletadas nas diferentes unidades armazenadoras de grãos e identificadas segundo origem e data de coleta, como segue: raça OS1, Passo Fundo, RS (1998); raça OS2, Ubiratã, PR (1998); raça OS3, Santo Ângelo, RS, (1998); raça OS4, Saldanha Marinho, RS (1998); e raça OS5, Assai, PR (2000).

Cada raça de O. surinamensis apresentou diferente histórico de exposição aos inseticidas piretróides (deltamethrin e bifenthrin) e aos organofosforados (pirimiphos-methyl e fenitrothion).

Todas as raças, desde a época da coleta, foram mantidas no Laboratório de Entomologia da Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS, e, em virtude disso, receberam a designação: geração F_n+1, indicando a primeira geração obtida em laboratório.

Os insetos foram multiplicados em frascos de vidro, previamente esterilizados, vedados com massa para calafetar e papel filtro, contendo grãos de trigo quebrados, fornecidos como alimento. Os frascos foram mantidos em sala climatizada, em temperatura de 25 ± 1º C e umidade relativa do ar de 65 ± 5 %.

Para avaliação da resistência, foram realizados bioensaios seguindo-se o método recomendado pela FAO (Anônimo, 1974), com algumas modificações requeridas para a espécie em estudo. Foram usados insetos adultos de 0-20 dias de idade, não sexados.

Os inseticidas usados no experimento foram os piretróides deltamethrin (K-obiol 25 CE) e bifenthrin (Prostore 25 CE) e os organofosforados pirimiphos-methyl (Actellic 500 CE) e fenitrothion (Sumigran 500 CE).

Cada raça foi submetida a cinco tratamentos (quatro inseticidas e um controle). Os inseticidas foram diluídos em éter de petróleo para as concentrações requeridas, e 1,0 ml da concentração foi aplicado sobre papel filtro de 9 cm de diâmetro, colocado em placas de Petri, em quatro repetições. Após evaporação do solvente, dez insetos adultos de cada raça foram liberados no interior de cada placa. O experimento foi conduzido nas mesmas condições ambientais usadas na multiplicação dos insetos.

A avaliação da mortalidade, que visou a estabelecer as concentrações letais (CL₅₀), para cada raça, foi feita pela contagem do número de insetos vivos e mortos 24h após tratamento. Para determinação da CL₅₀ e demais parâmetros de regressão linear de cada raça, os resultados de mortalidade dos bioensaios foram analisados pelo programa estatístico GLIM, Royal Statistical Society, versão 3.77 (Crawley, 1993), com análise de variância (ANOVA) e significância pelo teste F (p£ 0,05) para a diferenciação das CL₅₀.